УДК 619:617-089.5:636.92
Статья: "Условия, необходимые для успешной анестезии кроликов"
Successful management of rabbit anesthesia

О.Н. Мелентьев кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры болезней птиц, рыб, пчел и пушных зверей. ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины».

Факторы, влияющие на риск анестезии у кроликов

Существует много факторов, влияющих на риск анестезии , наиболее существенными являются стресс, гипоксия, предшествующие болезни. Клинический осмотр перед анестезией дает представление об общем состоянии кролика. Взвешивание необходимо для точного расчета доз используемых препаратов. , корректный подсчет доз и наблюдение за ходом анестезии делают ее безопаснее.

There are many problems associated with rabbit anesthesia: stress, hypoxia and preexisting diseases. Clinical examination prior to anesthesia gives an idea of the general health status of the rabbit. An accurate weight is required to calculate the dosages of drugs that are to be used. Good anesthetic equipment, the correct range of drugs and an observant anesthetist improve anesthetic safety.

За десятилетия использования кроликов в качестве лабораторных животных и развития ветеринарной медицины кроликов, содержащихся как домашние питомцы, были предприняты попытки использования большинства препаратов, применяемых в медицинской и ветеринарной анестезиологии . Накопленный опыт свидетельствует, что многие средства применяемые для седации, анестезии и анальгезии, но эффективные и безопасные дозы препаратов, их фармакодинамика у этих животных, применение комбинаций препаратов, имеет значительные особенности .

Анестезия обоснованно воспринимается и владельцами как высоко рискованная процедура, хотя некоторые имеющиеся в настоящее время препараты можно использовать достаточно безопасно . Исследования смертности собак, кошек и кроликов, связанной с анестезией и седацией, опубликованные Brodbelt DC. at al. в 2008 году, показали, что средняя смертность собак составляет 0,17%, кошек 0,24%, а кроликов 1,39% . При разработке анестезиологического протокола необходимо учитывать значительные биологические особенности этих животных, что позволит уменьшить риск.

Существует много факторов, влияющих на риск анестезии, наиболее существенными являются стресс, гипоксия, предшествующие болезни. Часто несколько перечисленных факторов присутствуют у одного кролика. Громкие звуки, незнакомая обстановка, запах других животных также оказывают влияние .

Интубирование кролика

Интубирование трудно из-за анатомических особенностей ротовой полости, носоглотки и трахеи. Из-за малого объема грудной клетки у кроликов часто развивается гипоксия. Дыхательный объем составляет только 4-6 мл/кг и легкие имеют небольшой объем по сравнению с органами брюшной полости. Вдох и выдох осуществляются преимущественно за счет движений диафрагмы, а не за счет межреберных мышц. Такое положение кролика во время анестезии, когда органы брюшной полости давят на диафрагму, может препятствовать дыхательным движениям .

Даже внешне здоровые они могут быть скрытыми носителями таких заразных болезней как пастереллез и энцефалитозооноз. Поражение легких, вызванное в первую очередь Pasteurella multocida, может затруднить газообмен в альвеолах. Поражения почек и головного мозга, вызванные энцефалитозоонозом, могут привести к другим осложнениям.

Кроме того, если кролик перед газовой анестезией не был успокоен, он, почувствовав запах газа, задерживает дыхание, возникает апноэ в сочетании с брадикардией и гиперкапнией. В исследовании Flecknell et al. (1996), период апноэ длился от 30 секунд до 2 минут при использовании изофлюрана и галотана через лицевую маску и в индукционной камере . Некоторые анестетики (медетомидин/кетамин) вызывают падение артериального давления и оксигенации, увеличивая риск гипоксии .

Болезни зубов и нарушение работы кишечника вызывают истощение и слабость, усиленное слюнотечение может привести к обезвоживанию и нарушению баланса электролитов. Ожиревшие кролики склонны к развитию гипертензии и кардиальной гипертрофии. Гиперинсулинемия, гипергликемия и увеличение уровня триглицеридов часто встречаются в сыворотке крови ожиревших кроликов, и липидоз печени у них развивается быстро, после короткого периода без корма, особенно если у кролика сильный стресс.

Ожиревшие кролики - самые трудные пациенты для хирургических операций . Освобождение эндогенных катехоламинов в результате стресса и боли может быть причиной сердечной аритмии. Кролики чрезвычайно чувствительны к боли, особенно после операций на брюшной полости и удаления резцов. Боль является особенно сильным стрессором, она приводит к уменьшению аппетита, замедлению моторики кишечника, может вызвать кишечный стаз и, в конечном итоге, смертельный липидоз печени. Врожденные пороки сердца, такие как дефект межжелудочковой перегородки, приводят к кардиомиопатии, особенно у кроликов гигантских пород .

Клинический осмотр перед анестезией

Клинический осмотр перед анестезией дает представление об общем состоянии кролика. Некоторые ослабленные кролики нуждаются в поступлении питательных веществ перед анестезией. Дегидратированные, в состоянии шока или гипотензии пациенты нуждаются во внутривенном или внутрикостном введении жидкостей. У кроликов не бывает рвоты , таким образом, в выдержке без корма необходимости нет, хотя короткий период в 1-2 часа позволяет быть уверенным, что в ротовой полости нет кормовых частиц, и желудок не переполнен.

Взвешивание необходимо для точного расчета доз используемых препаратов. Количество корма в желудочно-кишечном тракте изменяется в разное время дня и может повлиять на результаты взвешивания. Кролики могут иметь значительное количество корма в пищеварительном тракте, особенно в слепой кишке. Жирные животные нуждаются в меньших дозах препаратов, чем тощие, поэтому некоторые авторы рекомендуют рассчитывать дозы исходя из уровня метаболизма, зависящего от массы тела .

Во время анестезии опасность гипоксии можно снизить, если положить его таким образом, чтобы органы брюшной полости не давили на диафрагму. Вытягивание шеи и извлечение языка из ротовой полости не только позволяет следить за цветом слизистой оболочки, но также убирает основание языка из глотки и открывает дыхательные пути.

Дыхательные движения осуществляются в большей степени за счет движений диафрагмы, и визуальный подсчет может быть затруднен, хирургические поля также затрудняют наблюдение за дыханием. Во всех случаях предпочтительнее использовать монитор состояния пациента.

При анестезии они нуждаются в постоянном поступлении кислорода. Оксигенация перед анестезией снижает риск возникновения гипоксии, если кролик задерживает дыхание. Кислород можно давать через лицевую маску (Фото. 1), эндотрахеальную или назальную трубку или даже через трубку, вставленную в глотку через рот.

Сбалансированная анестезия

Как и у животных других видов, только сбалансированная анестезия позволяет успешно провести хирургическую операцию. Слишком легкая анестезия приводит к пробуждению животного во время операции при сильном раздражении тканей и проявляется движением животного или даже криками, у такого пациента может развиться гипоксия и цианоз. Реакция анестезиолога на длительную задержку дыхания - снижение концентрации анестетика - может привести к слишком легкому наркозу и появлению чувствительности. Увеличение концентрации газа необходимо для углубления наркоза. Если кролик не интубирован, запах газа вызывает задержку дыхания и поступление газа прекращается, достижение хирургического наркоза затрудняется. Медленное увеличение концентрации газа после эффективной премедикации предотвращает задержку дыхания при использовании лицевой маски.

Эндотрахеальная интубация

Эндотрахеальная интубация (фото. 2) предотвращает появление проблем связанных с задержкой дыхания, позволяет вводить кислород и значительно снижает смертность. Эндотрахеальная интубация позволят также в случае необходимости проводить искусственную вентиляцию легких. Хорошее содержание после операции и адекватная анальгезия необходимы для уменьшения боли и стресса, восстановления аппетита и предотвращения развития липидоза печени.

Прозрачная лицевая маска позволяет наблюдать за цветом слизистых оболочек. Необходимо иметь набор маленьких эндотрахеальных трубок (2,0-5,0 мм). Кролики имеют маленький дыхательный объем (4-6 мл/кг) и анестетик циркулирует в маленьком объеме. Хотя роторасширители использовать необязательно, они позволяют лучше следить за состоянием ротовой полости и гортани. Ларингоскоп с маленьким клинком (0 или 1) можно использовать для визуализации гортани и облегчения интубации.

Пульсоксиметр

Как часть анестезиологического оборудования можно использовать пульсоксиметр (фото. 3), лучшим местом для его прикрепления является язык, но это невозможно, если для анестезии используется лицевая маска. Удовлетворительный сигнал можно получить с паховых складок или с основания хвоста, если выщипать волосы и размещение сенсора возможно, также можно использовать ректальный зонд.

Возможность использования дыхательного монитора зависит от размеров кролика. Электрокардиограф можно использовать как сердечный монитор. Ректальную температуру можно определять стандартным или цифровым термометром с дистанционным датчиком. Датчик должен быть смазан и осторожно введен в прямую кишку для постоянного контроля ректальной температуры весь период анестезии.

Таким образом, хорошее оборудование для анестезии, корректный подсчет доз и наблюдение за ходом анестезии кроликов делают ее безопаснее. и применяемых препаратов зависит от общего состояния пациента, характера и планируемой продолжительности операции, возможностями клиники и владельца, при этом важную роль играет практический .

ЛИТЕРАТУРА

1. Пламб, Дональд К. Фармакологические препараты в ветеринарной медицине // М., 2002.- 856 с.
2. Aeschbacher, G. Rabbit anesthesia // Compendium on Continuing Education, 1995, 17, 1003-1011
3. Brodbelt DC, Blissitt KJ, Hammond RA, Neath PJ, Young LE, Pfeiffer DU, Wood JL. // The risk of death: the confidential enquiry into perioperative small animal fatalities. Vet Anaesth Analg. 2008 Sep;35(5):365-73
4. Calasans-Maia MD, Monteiro ML, Ascoli FO, Granjeiro JM. The rabbit as an animal model for experimental surgery // Acta Cir Bras.2009 Jul-Aug;24(4):325-8
5. Domestic Rabbits: Diseases and Parasites / N.M. Patton, K.W. Hagen, J.R. Gorham, and R.E. Flatt. Oregon State University, 2008. - 30 р.
6. Flecknell, P.A., Cruz, I.J., Liles, J.H., Whelan, G. Induction of anaesthesia with halothane and isoflurane in the rabbit: a comparison of the use of a face-mask or an anaesthetic chamber // Lab Anim., 1996; 30, 67-74
7. Gillett, C.S. Selected drug dosages and clinical reference data // In The Biology of the Laboratory Rabbit, 2nd edn. (P.J. Manning, D.H. Ringler, C.E. Newcomer, eds), Academic Press, 1994; pp 468-472
8. Grint NJ, Murison PJ. A comparison of ketamine-midazolam and ketamine-medetomidine combinations for induction of anaesthesia in rabbits // Vet Anaesth Analg. 2008 Mar;35(2):113-21
9. Inglis S, Strunk A. Rabbit anesthesia // Lab Anim (NY), 2009 Mar;38(3):84-5
10. Keeble E., Meredith A. Rabbit Medicine & Surgery (Self-assessment Colour Review) // Manson Publishing, Jan 2006, 192 р.
11. Lichtenberger M, Ko J. Anesthesia and analgesia for small mammals and birds // Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2007 May;10(2):293-315
12. Mason D.E. Anesthesia, analgesia, and sedation for small mammals // In Ferrets, Rabbits and Rodents, Clinical Medicine and Surgery. (E.V. Hillyer, K.E. Quesenberry, eds). 1997. - pp 378-391
13. Rabbits: Health, Husbandry and Diseases / V.C.G. Richardson. Blackwell Science Ltd, 2000.- 184 р.
14. Small Animal Clinical Pharmacology / Jill Maddison at al. - Elsevier Limited, 2008. - 589 p.

Дмитрий Тамошкин – главный ветврач ветклиники «Ветус»

УДК 619:636.92:615.211

Инъекционные препараты и их сочетания, используемые для анестезии кроликов

Инъекционные препараты используют для введения кроликов в анестезию при проведении различных диагностических и лечебных процедур. Их применение возможно как самостоятельно, так и перед ингаляционными препаратами. Для инъекционной анестезии, в отличие от ингаляционной, не требуется специального оборудования, по этой причине многие ветеринарные врачи вынужденны использовать этот метод. В настоящее время чаще используются различные сочетания препаратов для инъекционной и ингаляционной анестезии.

Накопленный опыт свидетельствует, что многие средства, применяемые для седации, анестезии и анальгезии можно использовать и для кроликов, но эффективные и безопасные дозы препаратов, их фармакодинамика, применение комбинаций препаратов, имеет значительные особенности. Ниже описываются некоторые препараты и их сочетания, действие которых на организм кроликов изучено и которые могут представлять интерес для ветеринарных врачей в нашей стране.

Ацепромазин (Acepromazine maleate) - производное фенотиазина, оказывает угнетающее воздействие на центральную нервную систему. Это ингибитор допамина, альфа-адренергический блокатор со слабой антимускариновой активностью. Основным при использовании ацепромазина в ветеринарии является его транквилизирующий эффект, к дополнительным, относят противоаритмический эффект и спазмолитическое действие. Он обычно используется для премедикации у животных многих видов. Ацепромазин оказывает гипотензивное действие и не обладает анальгетической активностью. Доза для кроликов в качестве транквилизатора 1 мг/кг в/м, эффект должен наступить в течение 10 минут и длиться 1-2 часа . Ghaffari MS et al., (2009) установили, что ацепромазин в обычной дозе уменьшает у кроликов продукцию слезной жидкости . У кроликов ацепромазин можно использовать для премедикации перед применением газового наркоза. Его можно применять в комбинации с буторфанолом для лучшего седативного эффекта.

Ксилазин (Xylazine) - является антагонистом альфа 2 -адренорецепторов, обладает у кроликов умеренным седативным и незначительным анальгетическим эффектом. Вызывает релаксацию скелетной мускулатуры посредством центрального действия. Раньше его использовали как монопрепарат или в комбинации с кетамином. Эта комбинация вызывает угнетение дыхания и сердечно-сосудистой системы, а в высоких дозах - сердечную аритмию и высокую смертность кроликов . Атипамезол — альфа адренергический блокатор - можно использовать как антагонист, для прекращения действия ксилазина.

Медетомидин (Medetomidine (Domitor, Pfizer) - более специфический альфа 2 агонист, чем ксилазин, с меньшим количеством побочных эффектов. Он значительно дороже и для кроликов требуются большие дозы, чем для животных других видов. Медетомидин можно использовать для премедикации или в сочетании с кетамином для хирургического наркоза . Медетомидин вызывает сужение периферических сосудов, изменяя кровоснабжение слизистых оболочек, так что ошибочно можно определить, что у животного цианоз. При использовании медетомидина часто развивается гипоксия, так что весь период анестезии необходимо применение кислорода .

Вызываемая медетомидином вазоконстрикция может препятствовать работе пульсоксиметра и венепункции для взятия крови и проведения инфузионной терапии. Этот препарат вызывает хорошее расслабление гортани, облегчающее эндотрахеальную интубацию. Он не вызывает угнетение дыхания и восстановление обычно происходит в течение трех часов. Восстановление можно ускорить применением атипамизола .

Буторфанол (Butorphanol) - синтетический антагонист-агонист опиатных рецепторов. Анальгетический эффект в 3-5 раз превышает действие морфина у человека и более чем в 30 раз у крыс . У кроликов буторфанол вызывает анальгезию и легкую седацию, не вызывает угнетение дыхания, если не использовать высокие дозы . Применяют для снятия послеоперационной боли в дозе 0,4 мг/кг перорально каждые 4-6 часов. В нескольких исследованиях было доказано, что использование высоких доз буторфанола вызывает меньший анальгетический эффект, чем более низких . Период полувыведения буторфанола у кроликов в дозе 0,5 мг/кг составляет 1,64 часа после внутривенного применения и 3,16 часа после подкожного . Буторфанол можно использовать для устранения угнетающего воздействия на дыхание µ- агонистов, таких, как фентанил, морфин и пефидин. Буторфанол (0,05 мг/кг подкожно или внутримышечно) используют в комбинации с медетомидином и кетамином для хирургического наркоза . Его также можно использовать в комбинации с ацепромазином для седации . Это сочетание вызывает вазодилятацию, что облегчает взятие крови и внутривенные инъекции.

Пропофол (Propofol) является гипнотическим препаратом короткого действия, не имеющим сходства с препаратами для общей анестезии, механизм действия не ясен . Как препарат, используемый для введения в анестезию, он имеет много преимуществ, включая глубокое гипнотическое воздействие и терапевтическую широту, быстрое начало действия и быстрое восстановление . Повторные дозы не накапливаются и пропофол можно использовать для поддержания анестезии путем длительной инфузии. Baumgartner CM et al. (2009) с этой целью применяли пропофол в дозе 4,0-8,0 мг/кг внутривенно, для поддержания анестезии 1,2-1,3 мг/кг/мин . Доза 5-14 мг/кг дает достаточно времени опытному анестезиологу для проведения интубации . После введения возможно кратковременное апноэ, а при применении высоких доз остановка дыхания.

Исследования Dikmen B. et al. (2010) показали, что использование пропофола предпочтительнее, чем кетамина у животных с почечной недостаточностью . Zhu T et al. (2008) установили, что пропофол усиливает печеночный кровоток . По данным Fudickar A. et al. (2009) введение пропофола вызывает такие негативные последствия, как острую брадикардию, асистолию, гиперлипемию и метаболический ацидоз, рабдомиолиз и миоглобинурию, которые описывают как Propofol infusion syndrome (PRIS). Пропофол не рекомендуется для длительной анестезии кроликов . В опытах Chen WH et al. (2006) пропофол оказывал прямое воздействие на сердце кроликов, вызывая резкое снижение артериального давления и брадикардию .

Кетамин (Ketamine) - диссоциативный препарат, который используют как единственный для введения в наркоз или в комбинации с другими препаратами для введения в наркоз и его поддержания. Кетамин вызывает симпатомиметический эффект, заключающийся в увеличении частоты сердечных сокращений, сердечного выброса и кровяного давления. Внутримышечное введение кетамина в дозе 40 мг/кг через 6,0 +/- 0,5 минут вызывало у кроликов анестезию продолжительностью 36,0+/-0,9 минут. Предварительное внутримышечное введение витамина С в дозе 30, 60 и 240 мг/кг сокращало время введения в наркоз и продлевало анестезию до 5,0 +/- 0,06 и 37,0 +/- 0,7; 4,0 +/- 0,5 и 39,0 +/- 0,6; 2,0 +/- 2,3 и 44,0 +/- 0,8 минут соответственно .

Исследования показали, что применение кетамина в дозе 10 мг/кг внутривенно у кроликов с травмой спинного мозга защищает его от ишемии и препятствует снижению уровня антиоксидантов .

Кетамин не устраняет окулярный, ларингеальный и глотательный рефлексы. Плохое мышечное расслабление делает кетамин непригодным для применения в качестве монопрепарата для анестезии перед хирургическими операциями, его применяют в комбинации с ксилазином или другими препаратами. Комбинации кетамин/диазепам и кетамин/ацепромазин увеличивают у кроликов внутриглазное давление .

Тилетамин/золазепам (tiletamine/zolazepame) - тилетамин - инъекционный анестетик, химически сходный с кетамином, золазепам - слабый диазепиновый транквилизатор. Фармакологическое действие комбинированного препарата сходно с кетамином и диазепамом. Пригодность тилетамин/золазепама для анестезии кроликов изучали Brammer DW et al. (1991). Внутримышечное введение 32 и 64 мг/кг препарата не вызвало анестезии и привело к нефротоксическому эффекту с развитием почечной недостаточности в течение 5 дней. Исследователи пришли к выводу, что этот препарат противопоказан кроликам . Нефротоксичность тилетамин/золазепама для кроликов установлена и в исследовании Doerning BJ. et al. (1992) . Данные о неспособности тилетамин/золазепама вызывать анестезию кроликов получены Dupras J. et al. (2001) . В то же время, необходимо учитывать невозможность легального использования многих препаратов, применяемых во всем мире, в нашей стране. Если ветеринарная клиника не оборудована аппаратурой для использования ингаляционной анестезии, и не имеет разрешения на использование кетамина, одним из немногих препаратов выбора в таком случае остается тилетамин/золазепам который необходимо комбинировать с другими лекарственными средствами.

Кетамин и ксилазин.

При минимально инвазивных процедурах продолжительностью не более 30-40 минут, кетамин в дозе 35 мг/кг в смеси с ксилазином 5 мг/кг вводят внутримышечно или подкожно. После введения в наркоз, кролика можно интубировать и, при необходимости, подключить к аппарату искусственного дыхания. Поддержание анестезии до 3 часов обеспечивается внутривенным введением смеси кетамин/ксилазин (10+2 мг/кг) .

Кетамин, ксилазин и ацепромазин.

Hobbs BA. et al. (1991) установили, что комбинация кетамин/ксилазин с ацепромазином предпочтительнее, если необходима продолжительная операция, в их исследовании период анестезии составлял 60-120 минут . Но эта комбинация при внутримышечном введении вызвала периневральное воспаление и фиброз у 4 кроликов из 6 в исследовании, проведенном в 1999 г. Vachon P. .

Медетомидин и кетамин.

Смесь медетомидин/кетамин в дозе 0,35 мг/кг + 5 мг/кг при внутривенном введении обеспечивает хирургический наркоз продолжительностью не менее 35 минут . Внутривенное введение атипамезола прекращает действие этих препаратов. Проведенные на кроликах исследования (Kim MS et al. 2004) показали, что оптимальными для реверсии наркоза являются равная или двойная доза атипамизола .

Кетамин, медетомидин и изофлюран.

Кетамин в дозе 15 мг/кг и медетомидин 0,25-0,5 мг/кг подкожно или внутримышечно в сочетании с изофлюраном 1,5-2,0% обеспечивают достаточную степень наркоза для проведения орхиэктомии и овариоэктомии. Подкожная инъекция переносится легче, но после внутримышечного введения индукция в анестезию происходит быстрее. Атипамезол является эффективным антагонистом, в дозе 0,5-1,0 мг/кг, быстрее действует при внутримышечном введении по сравнению с подкожным ускоряет восстановление кролика .

Кетамин и ксилазин с буторфанолом.

В исследовании Marini RP et al. (1992) кетамин/ксилазин в дозе 35 мг/кг+5 мг/кг применяли вместе с буторфанолом 0,1 мг/кг. Включение в эту комбинацию буторфанола продлевало анестезию в 1,4-1,6 раза с 77 до 99 мин. .

Медетомидин, кетамин и буторфанол с изофлюраном.

Сочетание медетомидина, кетамина и буторфанола используют для непродолжительных процедур, таких как подрезка резцов или рентгенография. Его также можно использовать для введения в анестезию перед применением ингаляционной анестезии при более длительных процедурах, таких как обработка коренных зубов, удаление резцов, в этих случаях необходима интубация, так как использование лицевой маски невозможно . Ингаляционную анестезию также рекомендуем при промывании слезного канала.

Медетомидин в дозе 0,2 мг/кг в сочетании с 10 мг/кг кетамина и 0,5 мг/кг буторфанола вводят подкожно. Это составляет 0,2 мл/кг Domitor (Pfizer), 0,1 мл/кг кетамина и 0,05 мл/кг Torbugesic (Fort Dodge). Инъекция обычно переносится болезненно, действие препаратов начинается через 5-10 минут и продолжается приблизительно 20 минут. Полное восстановление происходит за 2-4 часа .

В конце операции, действие медетомидина можно снять атипамезолом 1 мг/кг (0,1 мл/кг) (Antisedan (Pfizer). Период действия атипамезола составляет 15-40 минут. Анальгетическое действие медетомидина также снимается атипамезолом. Если не вводить атипемезол, восстановление после анестезии происходит через 1-2 часа.

Тилетамин/золазепам и ксилазин.

Dupras J. et al. (2001) изучили возможность использования комбинации тилетамин/золазепама в дозе 20 мг/кг в сочетании с ксилазином 3 мг/кг. при внутримышечном введении. Введение в анестезию продолжалось около 3 мин., продолжительность анестезии составила в среднем 109,4 мин. В связи со способностью ксилазина вызывать существенную гипоксию, исследователи указывают на обязательное обеспечение кролика кислородом .

Разина А.В и др. (2010) рекомендуют внутримышечное ведение рометара в дозе 4,0-6,0 мг/кг с последующим (через 20 мин.) внутримышечном введении тилетамин/золазепама в дозе 5-10 мг/кг. Через 5 мин. После внутримышечного введения золетила наступала полная релаксация мышц, отсутствовали корнеальный рефлекс и болевая чувствительность, зрачок расширялся. Анестезия продолжалась около 30 мин., через 1,5 часа кролик передвигался самостоятельно.

Таблица - Препараты и их сочетания, рекомендуемые для седации и анестезии кроликов

Таким образом, существующие в настоящее время препараты и возможность их использования в различных сочетаниях позволяют, в большинстве случаев, выбрать метод анестезии в соответствии с состоянием кролика, характером и продолжительностью запланированной операции. При этом значительную роль играет оборудование ветеринарной клиники и опыт врача.

Кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры болезней птиц, рыб, пчел и пушных зверей фБгоу впо «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины», Центр ветеринарной медицины “Ветус”.

-- [ Страница 2 ] --

В крови определяли количество эритроцитов, содержание в них гемоглобина, СОЭ, цветной показатель, количество лейкоцитов и изучали лейкограмму по общепринятым в гематологии методикам.

Кровь для получения сыворотки брали из яремной вены в сухие пробирки до введения препаратов, через 24 часа, 1, 3, 7 и 14 суток после проведения опыта.

В сыворотке крови определяли: количество глюкозы, общего белка, активность АсАТ и АлАТ, концентрацию общего билирубина, мочевины, креатинина с помощью биохимического анализатора - полуавтомата BioChem SA.

Электрокардиографические исследования проводили при помощи электрокардиографа ЭК 14 Т, запись осуществляли во втором отведении; оценку проводили общепринятым в кардиологии методом.

Орхидэктомию у кролей поводили закрытым способом.

Ультразвуковые исследования органов брюшной полости кроликов проводили с помощью портативного ветеринарного ультразвукового сканера PU 2200 Vet до введения препаратов, через 10 минут после введения 2% раствора ксилазина гидрохлорида, золетила, а также их комбинации через 10, 30, 60, 90, 120, 150 и 180 минут по разработанной нами методике.

Морфологическую картину органов брюшной полости оценивали при вскрытии кроликов на разных сроках исследования: без применения рометара и золетила (контрольная группа), через 30 минут после введения указанных препаратов, через 1 сутки после оперативного вмешательства и через 7 суток после общего обезболивания.

Для гистологических исследований кусочки органов фиксировали в 10% нейтральном формалине, гистосрезы готовили на санном микротоме толщиной 5-7 мкм, окрашивали гематоксилином и эозином.

Статистическая обработка цифрового материала результатов исследования была осуществлена методом вариационной статистики с использованием пакета прикладных программ Microsoft Excel XP, выведением M, m, коэффициента достоверности Р с учетом критерия Стьюдента.

Степень достоверности показателей относительно таковых до опыта, отмеченных * были меньше 0,05.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Подбор препаратов и оценка степени общей

анестезии у кроликов

Проведенные исследования позволили определить наиболее оптимальный вариант общей анестезии для кроликов. Во всех случаях оказалась оправданной премедикация 2% раствором ксилазина гидрохлорида.

Введение рометара сопровождалось изменениями, характерными для препаратов данной группы. Через 5 - 10 минут после введения препарата животные опускали голову, наблюдались седация и снижение болевой чувствительности, однако, на некоторые манипуляции, связанные с фиксацией в боковом положении, кролики оказывали достаточно активное сопротивление.

Внутривенное струйное введение 1% водной эмульсии пропофола вызывало хорошо выраженную релаксацию мышц конечностей, но болевая чувствительность сохранялась, что исключало возможность проведения хирургических вмешательств.

Ингаляция эфиром вызывала отсутствие рефлексов и болевой чувствительности в течение 10 минут, тонуса мышц челюстей и век – 15 минут. Через 30 минут кролики пытались вставать, а через 40 минут могли самостоятельно изменять положение тела в пространстве.

Применение золетила-50 в качестве мононаркоза обеспечило мгновенную релаксацию мышц и отсутствие болевой чувствительности в течение 5 минут. Через 30 минут восстанавливалась двигательная активность кроликов, а через 1 час они могли самостоятельно передвигаться.

На фоне премедикации рометаром введение золетила – 50 как внутримышечно, так и внутривенно позволяло достичь хирургической стадии наркоза. Через 25-30 минут после внутримышечного и 30-35 минут после внутривенного введения восстанавливалась болевая чувствительность, через 45 – 60 минут кролики пытались вставать, а самостоятельно передвигаться могли через 90 минут.

3.2. Влияние препаратов для обезболивания и их комбинаций на клинический статус, морфологические, биохимические показатели крови и сердечную деятельность кроликов

3.2.1. Влияние рометара и эфира на организм кроликов

Премедикация рометаром вызывала незначительное повышение температуры тела кроликов первой подгруппы этой группы, которое сменилось понижением значения этого показателя после применения эфира и сохранялось в течение трех часов.

Через 10 минут после введения рометара отмечалось урежение пульса и частоты дыхательных движений, которые через 10 минут после применения эфира для наркоза сменялись учащением, но уже через 30 минут после -отмечалась тенденция к снижению, а через сутки значения частоты сердечных сокращений и дыхательных движений приближались к первоначальным.

В морфологическом составе крови кроликов этой подгруппы в течение часа отмечалась тенденция к снижению числа эритроцитов и содержания в них гемоглобина. После премедикации рометаром незначительно увеличивалось содержание лейкоцитов, которое сменялось уменьшением их числа после применения эфира. Через 3 часа после обезболивания регистрировали резкий подъем количества лейкоцитов, и только на седьмые сутки этот показатель восстанавливался до исходного уровня (рис. 1, 2).

Изменения в лейкограммах касались в основном количества сегментоядерных, палочкоядерных форм нейтрофилов и лимфоцитов.

Через 10 минут после внутримышечного введения рометара появилась тенденция к повышению процента сегментоядерных нейтрофилов, которая сохранялась в течение трех часов и после ингаляции эфира. Изменения количества лимфоцитов были подобны изменениям сегментоядерных нейтрофилов, но с противоположным знаком (рис. 3, 4).

В биохимическом составе сыворотки крови отмечалось снижение содержания глюкозы, активности АлАТ и АсАТ, повышение концентрации общего билирубина, мочевины, количества креатинина и общего белка. Первоначального уровня практически все показатели достигали через 14 суток (таб.2).

После введения рометара отмечалось урежение частоты сердечных сокращений, удлинение как систолического, так и диастолического периодов и значительное снижение амплитуды зубца R. Ингаляция эфира приводила к снижению продолжительности интервалов Q-T и R-R, деформации зубца Р, предшествовавшему не каждому комплексу QRS, увеличению амплитуды зубца Т, который становился отрицательным, снижению амплитуды зубца R.

Через 24 часа показатели электрокардиограмм практически не отличались от первоначальных.

3.2.2. Влияние золетила на организм кроликов

При изучении показателей, характеризующих клинический статус подопытных кроликов второй подгруппы первой группы, установлено понижение температуры тела, урежение сердечных сокращений и дыхательных движений, прослеживающихся в течение 3 часов после введения препарата и достигающих первоначального уровня через 1 сутки.

После внутривенного введения золетила наблюдалось снижение числа эритроцитов, содержания в них гемоглобина. Через сутки эти показатели практически не отличались от данных, полученных до введения препарата. Указанные изменения сопровождались увеличением числа лейкоцитов, сохранявшимся в течение трех суток (рис. 1, 2).

В лейкограммах отмечалось увеличение процентного содержания палочкоядерных нейтрофилов уже через час после введения животных в наркоз и на этом уровне сохранялось в течение трех суток. Через час от начала обезболивания увеличивалось число сегментоядерных нейтрофилов, что, как и у животных предыдущей подгруппы, приводило к снижению числа лимфоцитов и, наоборот, в те же сроки исследования (рис. 3, 4).

В течение трех суток после внутривенного введения золетила наблюдалось снижение уровня глюкозы и увеличение количества общего белка в сыворотке крови.

Через 10 минут после введения золетила отмечалось незначительное снижение частоты сердечных сокращений, снижение амплитуды зубца S в некоторых циклах. Через час в отдельных циклах отмечалась экстрасистолия, увеличение амплитуды зубцов Р и R, а зубец Т становился отрицательным. Увеличивалась продолжительность интервалов R-R и Q-T.

Через сутки показатели электрокардиограмм приближались к первоначальным.

3.2.3. Влияние рометара и золетила на организм кроликов

После введения золетила на фоне премедикации рометаром у кроликов начиналось снижение температуры тела, и через три часа достигало минимального уровня (35,2±0,36С).

Наблюдавшееся после введения рометара урежение пульса, после введения золетила сменялось кратковременной нормализацией, после чего вновь наблюдалась брадикардия. Описанные изменения сопровождались урежением дыхания. Через сутки значения этих показателей практически не отличались от доопытных.

Тенденция к снижению числа эритроцитов и содержания в них гемоглобина прослеживалась в течение часа после введения золетила и сменялась быстрым восстановлением количества эритроцитов, которое через три часа существенно не отличалось от данных, полученных до введения рометара и золетила (рис. 1).

В картине белой крови изменения были аналогичны таковым кроликов первой подгруппы этой группы, но с меньшей степенью выраженности.

Количество лейкоцитов через 10 минут после премедикации увеличивалось, а после введения золетила-50 – снижалось в течение 30 минут. Через три часа отмечалось увеличение содержания лейкоцитов, сменившееся снижением и достигающим на третьи сутки минимального значения, затем отмечалась тенденция к его повышению (рис. 2).

Изменения в лейкограммах были аналогичными таковым животных второй подгруппы, но выражены в меньшей степени. Через 10 минут после применения золетила-50 в крови появлялись юные нейтрофилы, которые в другие сроки исследования не обнаруживались в периферической крови кроликов этой подгруппы. Процентное содержание палочкоядерных форм нейтрофилов через 10 минут после премедикации снижалось. Через 10 минут после достижения хирургической стадии наркоза отмечалось повышение процента палочкоядерных нейтрофилов, которое продолжалось в течение 24 часов и только на седьмые сутки их число приближалось к исходному.

Количество сегментоядерных нейтрофилов через 10 минут после введения

Рисунок 1 - Изменения количества эритроцитов у Рисунок 2 - Изменения количества лейкоцитов у

кроликов второй группы, 1012/л кроликов второй группы, 109/л

Рисунок 3 - Изменения процентного содержания Рисунок 4 - Изменения процентного содержания

сегментоядерных нейтрофилов у кроликов лимфоцитов у кроликов второй группы

второй группы

Таблица 2 - Изменения биохимических показателей сыворотки крови кроликов

Кастрация - решение проблемы плодовитости кроликов. Кому не известно расхожее выражение «плодятся, как кролики»! Это животное стало практически символом плодовитости, о чем, конечно, должны не забывать и хозяева декоративных ушастиков, заводя у себя декоративный вариант домашних питомцев.

Чтобы избежать многих нежелательных явлений, специалисты рекомендуют вовремя стерилизовать или кастрировать их . Чем это грозит или, наоборот, не грозит кролику и нужно ли это делать?

Этой операции можно подвергнуть и самку, и самца. В первом случае крольчихам перевязывают маточные трубы, искусственно создавая их непроходимость, а кроликам «мужского пола» – семенные протоки или же удаляют фрагмент их.

То есть по большому счету грубого вмешательства в кроличий организм не происходит: половые органы не удалены, работают, как говорится, в штатном режиме, продолжая вырабатывать гормоны. Половой инстинкт у особей не нарушается, не снижается, они способны спариваться. Но цель самой процедуры – не позволить кроликам бесконтрольно размножаться – достигнута.

После стерилизации питомец может похудеть или стать агрессивным. Может ли стерилизация как-то повлиять на кроличий организм? Из-за естественной потребности в продолжении рода, да еще при нормально функционирующей половой системе, стерилизованные кролики подвергаются крупному гормональному сбою.

Организм животного подвергается стрессу, следствием которого могут стать серьезные нарушения здоровья, в частности проблемы с мочеполовой системой. Бедный питомец может как бы без видимых причин похудеть, отказываться от еды, в его поведении появляются элементы агрессии даже по отношению к хозяевам.

Кастрация: за и против

Под кастрацией подразумевается операция по полному удалению органов размножения, т.е. вследствие ее крольчихи лишаются яичников (частичная кастрация) или их же с маткой вместе (полная), а у самцов удаляются оба яичка.

Если стерилизация устраняет лишь функцию размножения со всеми вытекающими отсюда гормональными последствиями, то кастрация гормональных проблем в кроличьем организме не создает.

Минусы

Надо признать, что подобное хирургическое вмешательство при множестве плюсов, о которых поговорим ниже, имеет и некоторые малоприятные моменты:

• как и любая операция, это травмирование и стресс (как для питомца, так и для хозяина);
• денежные траты;
• дополнительный уход.

Плюсы

Несмотря на некоторые «против», специалисты, отвечая на вопрос «обязательно ли кастрировать декоративных кроликов?», утверждают, что для ушастиков обоих полов кастрация является наилучшим выходом. За – очень много доводов:

В каком возрасте делать

Нередко случается, что кастрация должна быть произведена уже немолодому пушистику по состоянию здоровья. Однако ветеринары считают, что лучше это сделать когда кролик еще молод, здоров и энергичен.

Стерилизацию следует проводить, когда питомцу исполнится полгода. Крольчиха достигает половозрелого возраста около 4-х месяцев от роду, и в принципе операция уже возможна. Однако более безопасным считается 6-месячный возраст.

Показатель для самцов – опущение яичек в мошонку. Это тоже происходит примерно в том же возрасте – 3,5-4 месяца.

Раньше делать такую операцию не стоит: мало того, что это технически сложнее, так еще и непредсказуемо для здоровья кролика.

Не возьмется «доктор Айболит» и за кастрацию старого кролика. По статистике, вероятность неблагополучного исхода операции с возрастом увеличивается. И даже пациента, перевалившего двухлетний возрастной рубеж, уже следует подвергнуть тщательному обследованию с проведением анализов.

Если кролику больше 4-х лет, то вероятность его гибели значительно выше, чем у 6–9-месячного его собрата.

Когда еще нельзя?

Если домашний питомец перебирает с весом, операцию по кастрации ему проводить не станут – пока не войдет в норму.

Так же поступят и при наличии каких-то заболеваний – сначала пушистого пациента надо вылечить.

Как происходит операция

Наркоз. Операционные процедуры для самцов и самок отличаются. У кроликов полностью удаляют семенники. Это можно совершить, сделав один или два надреза.

В первом варианте через надрез удаляются оба семенника, во втором – надрезы делаются над каждым из них, и органы удаляются по отдельности. Проходит все это под местной анестезией.

Разрезы, обработанные антисептиком, могут оставаться открытыми. «Закрытый» вариант предполагает наложение швов или нанесение хирургического клея.

Операция у самки более сложная. У крольчихи удаляют все детородные органы, и проведение такого вмешательства требует применения наркоза. После удаления ушивают и кровеносные сосуды, которые эти органы питали, и накладывают закрывающие разрез швы.

Если вас волнует качество и влияние наркоза на оперируемую питомицу, надо заранее «провести мониторинг» ветеринарных лечебниц, изучить отзывы хозяев, столкнувшихся с такой проблемой, и выбрать специалиста, у которого уже есть богатый опыт лечения, в том числе и хирургического, декоративных кроликов.

Операция: до и после

Перед ответственным моментом следует уточнить в клинике:

• чему будет подвергнут ваш любимец – стерилизации или кастрации;
• какие анализы нужно сделать дополнительно;
• какие медикаментозные препараты или приспособления могут понадобиться в послеоперационный период;
• как подготовить кролика к операции.

Не стоит держать питомца полсуток на «голодной диете». Для постоянно жующего животного это стресс. Надо просто уменьшить обычную дозу.

…Но вот все необходимые манипуляции по предотвращению кроличьего «демографического взрыва» завершены, и теперь наступает ответственный период – послеоперационный уход. О том, как его осуществлять, надо непременно выяснить еще в ветеринарной клинике.

Непременно поинтересуйтесь у доктора, какого поведения можно ожидать от прооперированного кролика, чтобы не пугаться «ненормальностей»; как должно выглядеть место разреза и послеоперационный шов; как их обрабатывать.

Надо быть готовым к тому, что в первые послеоперационные часы кролика будет пошатывать, и вести себя он может весьма непривычно.

Поместить его надо на чистую жилплощадь и обеспечить комфорт, покой и питье. Лоток тоже должен быть чистым и заполнен свежим наполнителем (как вариант – клочками бумаги – вполне нейтральный материал).

Еду можно предложить через несколько часов, но не давать объедаться хотя бы в первые три дня.

Проконсультируйтесь у врача как ухаживать за любимцем после операции. Наблюдайте как за аппетитом, так и за мочеиспусканием и стулом питомца. Если вдруг заметили, что он не ест, что уже долго не мочится, или у него отсутствует стул, или, наоборот, имеет место понос, – это повод обратиться к специалисту.

Прооперированное место следует периодически обследовать. Шов должен быть сухим, чистым. У кролика нередко возникает желание погрызть швы – надо каким-то образом обезопасить их, несмотря на активное неприятие питомцем всяческих защитных бандажей и воротников.

Если шов «чувствует себя» нормально, его не надо ничем обрабатывать. А вот обезболивающее кролику, а особенно крольчихе, отнюдь не помешало бы. Боль может замедлить послеоперационную реабилитацию животного, мешая как его питанию, так и личной гигиене.

Несмотря на то, что через пару дней кролик потребует активного движения по комнате, пока не позволяйте ему этого: может быть задето и травмировано место разреза.

Пусть вас не волнует, если заметите припухлость мошонки. Если это наблюдается не больше двух недель, то считается нормой.

После кастрации кроликов нельзя поселять вместе с крольчихами «детородного» возраста. Дело в том, что у прооперированного самца сперма, оставшаяся в семявыводящих протоках, еще долго сохраняет свои свойства, а уровень тестостерона не сразу снизится до «нуля», потому кролик еще в течение 3-4 недель будет предпринимать попытки спаривания, и крольчиха может забеременеть.

Цена вопроса

Операция по стерилизации или кастрации, естественно, процедура платная. То, сколько она стоит, отличается в разных городах и даже в разных клиниках. В частных ветучреждениях цена, как правило, выше, чем в государственных.

Кастрировать самца дешевле, чем самку. Это еще может зависеть и от породы ушастика. Нередко она равна или превышает цену самого «пациента». Стоимость только собственно хирургической манипуляции начинается от 2000 рублей . Надо добавить еще цену анестезии, расходных материалов, медикаментов, капельницы, а также дополнительных исследований – УЗИ, анализов, эхо- и электрокардиограмму. Не исключено, что придется на какое время оставить домашнего любимца в стенах клиники.

Не следует сбрасывать со счетов и такие статьи расходов как транспортировка туда–обратно, предварительная консультация ветеринара и его же итоговый осмотр, а также покупка защитных приспособлений (бандажа/воротника).

Если вы счастливый обладатель пары-тройки декоративных кроликов, то во избежание проблемы кроличьего перенаселения должны заранее непременно решить для себя, как поступить с половыми интересами своих питомцев и какой из выходов вам покажется более гуманным – стерилизация или кастрация, изучив советы и отзывы специалистов и коллег по хобби.

Вконтакте